Preview

Полирезистентность сероваров сальмонелл, выделенных от птицы и из продуктов птицеводства

Полный текст:

Аннотация

Сальмонеллёзы  остаются  важной  проблемой  не  только  в  РФ,  но  и  во  всем  мире  как  в ветеринарии,  так  и  в  медицине.  Наибольший  ущерб  сальмонеллы  наносят  птицеводству. Чаще  всего  от  сельскохозяйственной  птицы  и  из  продуктов  птицеводства  выделяют S.  Enteritidis,  S.  Typhimurium,  S.  Infantis,  S.  Gallinarum-pullorum.  Именно  эти  серовары сальмонелл  вызывают  у  людей  вспышки  пищевых  токсикоинфекций.  Для  профилактики и  лечения  сальмонеллезов  применяют  антибиотики  различных  групп:  β-лактамы, фторхинолоны,  цефалоспорины  и  др.  К  сожалению,  в  настоящее  время  большинство антибиотиков  последнего  поколения  оказались  неэффективными.  При  этом  у  многих изолятов  сальмонелл  обнаружена  множественная  лекарственная  устойчивость  (МЛУ). Штаммы  с  МЛУ  стали  активно  вытеснять  те,  которые  обладали  устойчивостью  только  к одному  или  двум  антибиотикам.  Бактериальные  штаммы,  устойчивые  к  антибиотикам, передаются  человеку  при  употреблении  недостаточно  термически  обработанного  мяса птицы, при контакте с сырыми продуктами птицеводства, а также через яйца и яйцепродукты. Было исследовано 45 штаммов сальмонелл, выделенных от больной птицы, а также из тушек и птичьих мясных продуктов. Культивирование, изучение биохимических, серологических свойств  и  вирулентности  проводили  по  стандартным  методам.  Чувствительность  к 35 антибиотикам определяли с помощью диско-диффузионного метода. При исследовании антибиотикорезистентности сальмонелл сероваров S. Enteritidis, S. Typhimurium, S. Infantis, установлено, что все они обладали множественной лекарственной устойчивостью, причем большинство штаммов было устойчиво к 11–18 препаратам из 35 используемых. Не было обнаружено ни одного штамма устойчивого только к 1–7 антибиотикам. Все штаммы были полирезистентны, при этом 100% сальмонелл были устойчивы к клиндамицину, тилозину, олеандомицину, рифампицину, ампициллину, пенициллину. Более 80% изученных штаммов были  резистентны  к  эритромицину,  доксициклину,  тетрациклину.  Аминогликозиды (канамицин,  неомицин,  стрептомицин,  гентамицин,  амикацин),  амфениколы (хлорамфеникол)  подавляли  рост  60–90%  штаммов  сальмонелл.  Наиболее  эффективными оказались фторхинолоны 2-го и 3-го поколения, способные подавлять рост 80-100% изолятов, особенно  ципрофлоксацин  и  энрофлоксацин.  Эти  препараты  являются  резервными антибиотиками.  Однако  были  обнаружены  изоляты,  устойчивые  к  ципрофлоксацину и  энрофлоксацину,  что  настораживает.  Фторхинолоны  4-го  поколения  показали  себя менее  эффективными,  особенно  для  S.  Infantis.  Возможно,  это  связано  с  использованием фторхинолонов среди птицы на крупных птицеводческих предприятиях для профилактики сальмонеллезов.  К  цефалоспоринам  первого  поколения  (цефазолин,  цефалексин)  были устойчивы  только  около  30%  изолятов.  Среди  цефалоспоринов  3-го  поколения  наиболее эффективными  оказались  цефаперазон  и  особенно  цефтриаксон,  к  которому  не  был устойчив ни один изолят сальмонелл. К цефепиму (цефалоспорину 4 поколения) отмечается устойчивость  47%  S.  Typhimurium,  тогда  как  к  другим  серовариантам  проявляется чувствительность до 67%.

Об авторах

М. Н. Лощинин
ФГБНУ «Федеральный научный центр – Всероссийский научно-исследовательский институт экспериментальной ветеринарии имени К.И. Скрябина и Я.Р. Коваленко Российской академии наук»
Россия

Лощинин Максим Николаевич

 Рязанский пр. 24 к 1, Москва



Н. А. Соколова
ФГБНУ «Федеральный научный центр – Всероссийский научно-исследовательский институт экспериментальной ветеринарии имени К.И. Скрябина и Я.Р. Коваленко Российской академии наук»
Россия

Соколова Нина Аркадьевна

 Рязанский пр. 24 к 1, Москва



А. М. Абдуллаева
ФГБОУ ВО «Московский государственный университет пищевых производств»
Россия

Абдуллаева Асият Мухтаровна



Список литературы

1. Абдуллаева, А. М., Смирнова, И. Р., & Трохимец, Е. В. (2017). Микробиологический контроль полуфабрикатов из мяса индеек при холодильном хранении. Ветеринария, 8, 49-53.

2. Абдуллаева, А. М., Блинкова, Л. П., & Першина, Т. А. (2019). Испытание бактериофагов как безопасных средств защиты от контаминации микроорганизмами куриного фарша. Проблемы ветеринарной санитарии, гигиены и экологии, 3(31), 11–15. http://dx.doi.org/10.25725/vet.san.hyg.ecol.201903004

3. Ахметова, Л. И., & Розанова, С. М. (2000). Чувствительность к антимикробным препаратам штаммов шигелл и сальмонелл, выделенных в Екатеринбурге. Клиническая микробиология и антимикробная химиотерапия, 3(2), 58–62.

4. Виткова, О. Н. (2016). Анализ эпизоотической ситуации по сальмонеллезу на основании данных ветеринарной статистической отчетности. В Актуальные ветеринарные и технологические решения в промышленном птицеводстве. http://zhukov-vet.ru›doc/bird/Виткова.pdf (дата обращения: 25.06.2019).

5. Елиусизова, А. Б., Шубин, Ф. Н., Кузнецова, Н. А., & Бахолдина, С. И. (2010). Чувствительность к фторхинолонам сальмонелл в Сибири и на Дальнем Востоке. Тихоокеанский медицинский журнал, 4, 51–54.

6. Лощинин, М. Н., & Соколова, Н. А. (2015). Чувствительность к антимикробным препаратам штам мов сальмонелл. Труды ВИЭВ, 78, 250–256.

7. Миндлин, С. З., & Петрова, М. А. (2017). О происхождении и распространении устойчивости к антибиотикам: результаты изучения древних бактерий из многолетнемерзлых отложений. Молекулярная генетика микробиология и вирусология, 35(4), 123–131.

8. Пименова, В. В., Лаишевцев, А. И., & Пименов, Н. В. (2017). Основные направления оздоровительных мероприятий при сальмонеллёзе птиц: принципы и недостатки антибиотикообра-боток. Russian Journal of Agricultural and SocioEconomic Sciences, 11(71), 496-510. http://dx.doi.org/10.18551/rjoas.2017-11.66

9. Пименов, Н. В., & Лаишевцев, А. И. (2017). Современные аспекты борьбы с сальмонеллёзной инфекцией. Издательство «Старая Басманная».Плиска, А. А., Самокрутова, О. Н., Середкина, И. Н., Аблов, А. М., Батомункуев, А. С., Барыш ни-ков, П. И., & Анганова, Е. В. (2012). Чувствительность к антибиотикам микроорганизмов, выделенных при кишечных инфекциях собак в условиях Прибайкалья. Вестник Омского государственного аграрного университета, 4(8), 65–69.

10. Рожнова, С. Ш., Христюнина, О. А., & Агафонова, Е. И. (2011). Роль фенотипических методов типирования сальмонелл в мониторинге за сальмонеллами. Эпидемиология и инфекционные болезни, актуальные вопросы, 3, 41-47.

11. Соколова, Н. А., Абдуллаева, А. М., & Лощинин, М. Н. (2015). Возбудители зооантропонозов, пищевых отравлений, порчи сырья и продуктов животного происхождения. ДеЛиплюс. Субботин, В. В., Лощинин, М. Н., Соколова, Н. А., & Коломыцев, С. А. (2013). Сальмонеллёзы – актуальная проблема ветеринарной медицины. Ветеринария и кормление, 4, 59–61.

12. Adzitey, F., Teye, G. A., & Amoako, D. G. (2020). Prevalence, phylogenomic insights, and phenotypic characterization of Salmonella enterica isolated from meats in the Tamale metropolis of Ghana. Food Science & Nutrition, 8(7), 3647–3655. https://doi.org/10.1002/fsn3.1647

13. Chan, M. (2012). Antimicrobial resistance in European Union and World: Keynote address at the conference on Combating antimicrobial resistance: time for action. Copenhagen, Denmark 14 march Available at: www.who.int D’Aoust, J. Y. (1991). Pathogenicity of foodborne Salmonella. The International Journal of Food Microbiology, 12(1), 17–40. http://dx.doi:10.1016/0168-1605(91)90045-q

14. D’Costa, V. M., McGrann, K. M., Hughes, D. W., & Wright, G. D. (2006). Sampling the antibiotic resistome. Science, 311(5759), 374–377. http://dx.doi:10.1126/science.1120800

15. Gelband, H., Molly Miller, P., Pant, S., Gandra, S.,Levinson, J., Barter, D., White, A., & Laxminarayan, R. (2015). The state of the world’s antibiotics 2015. Wound Healing Southern Africa,8, 30-34.

16. Goncuoglu, M., Ormanci, F. S. B., Uludag, M. & Cil, G. I. (2016), Prevalence and Antibiotic Resistance of Salmonella SPP. and Salmonella Typhimurium in Broiler Carcasses Wings and Liver. Journal of Food Safety, 36(4), 524-531. http://dx.doi:10.1111/jfs.12272

17. Lee, H. J., Youn, S. Y., Jeong, O. M., Kim, J. H., Kim, D. W., Jeong, J. Y., Kwon, Y. K. & Kang, M. S. (2019), Sequential Transmission of Salmonella in the Slaughtering Process of Chicken in Korea. Journal of Food Science, 84, 871-876. http://dx.doi:10.1111/1750-3841.14493

18. Nikaido, H. (2009). Multidrug resistance in bacteria. Annual Review of Biochemistry, 78, 119-146. http://dx.doi:10.1146/annurev.biochem.78.082907.145923

19. Nhung, N. T., Chansiripornchai, N., & CarriqueMas, J. J. (2017). Antimicrobial Resistance in Bacterial Poultry Pathogens: A Review. Frontiers in Veterinary Science, 4, 126. http://dx.doi:10.3389/fvets.2017.00126

20. Sánchez Salazar, E., Gudiño, M.E., Sevillano, G., Zurita, J., Guerrero López, R., Jaramillo, K. & Calero Cáceres, W. (2020). Antibiotic resistance of Salmonella strains from layer poultry farms in central Ecuador. Journal of Applied Microbiology, 128, 1347–1354. http://dx.doi:10.1111/jam.14562

21. Siriken, B., Türk, H., Yildirim, T., Durupinar, B. & Erol, I. (2015), Prevalence and Characterization of Salmonella Isolated from Chicken Meat in Turkey. Journal of Food Science, 80, M1044-M1050. http://dx.doi:10.1111/1750-3841.12829

22. Shrestha, A., Bajracharya, A. M., Subedi, H., Turha, R. S., Kafle, S., Sharma, S., Neupane, S., Chaudhary, D. K. (2017). Multi-drug resistance and extended spectrum beta lactamase producing Gram negative bacteria from chicken meat in Bharatpur Metropolitan, Nepal. BMC Research Notes,10, 574. https://doi.org/10.1186/s13104-017-2917-x

23. Yang, X., Wu, Q., Zhang, J., Huang, J., Chen, L., Wu, S., & Wei, X. (2019). Prevalence, bacterial load, and antimicrobial resistance of Salmonella serovars isolated from retail meat and meat products in China. Frontiers in Microbiology, 10, 2121. http://dx.doi.org/10.3389/fmicb.2019.02121

24. Yu, H., Qu, F., Shan, B., Huang, B., Jia, W., Chen, C., Li, A., Miao, M., Zhang, X., Bao, C., Xu, Y., Chavda, K. D., Tang, Y.-W., Kreiswirth, B. N., Du, H., Chen, L. (2016). Detection of the mer-1 Colistin Resistance Gete in Carbapenem- Resistant Enterobacteriaceae from Different Hospitals in China. Antimicrobial Agents and Chemotherapy, 60(8), 5033-5. http://dx.doi:10.1128/aac.00440-16

25. Zhao, X., Ye, C., Chang, W., & Sun, S. (2017). Serotype Distribution, Antimicrobial Resistance, and Class 1 Integrons Profiles of Salmonella from Animals in Slaughterhouses in Shandong Province, China. Frontiers in Microbiology, 8, 1049. Published 2017 Jun 21. http://dx.doi:10.3389/fmicb.2017.01049

26. Zou, W., Frye, J. G., Chang, C. W., Liu, J., Cerniglia, C. E., & Nayak, R. (2010). Microarray analysis of antimicrobial resistance genes in Salmonella enterica from preharvest poultry environment. Journal of Applied Micro biology, 107(3), 906–914. http://dx.doi.org/10.1111/j.1365-2672.2009.04270.x


Просмотров: 5


Creative Commons License
Контент доступен под лицензией Creative Commons Attribution 4.0 License.