Preview

Индикация биопленок и некультивируемых микроорганизмов при мониторинге биологической безопасности пищевого сырья

https://doi.org/10.36107/hfb.2019.i3.s260

Полный текст:

Аннотация

Актуальность исследования и наличие пробелов в существующем знании на тему. Мониторинговые исследования биологической безопасности пищевого сырья по микробиологическим показателям - актуальная проблема, в связи с увеличением числа пищевых инфекций во всем мире.

Цель работы - изучить особенности формирования биопленок и некультивируемых микроорганизмов при различных условиях культивирования

Методы. Морфометрические и денситометрические показатели биопленок и некультивируе-мых микроорганизмов исследовали при различных условиях культивирования. Для изучения роста и развития популяций микроорганизмов использовали среды, содержащие ростовые факторы для репарации клеточной стенки и реверсии L-форм микроорганизмов.

Результаты и их обсуждение. При микробиологическом контроле критических точек технологии животноводства и пищевых производств изучены видовой состав и этиологическая значимость факторов вирулентности штаммов, продуцирующих адгезивные антигены, бакте-риоцины, гемолизины, токсины, ^-лактамазы расширенного спектра, обусловливающие тенденцию роста множественной лекарственной устойчивости. Изучены морфофункциональные признаки биопленок, представляющих собой сообщества микроорганизмов, секретирующих полимерный матрикс и адгезированных к тканям восприимчивых видов животных и абиотическим поверхностям животноводческих помещений и пищевых производств. Установлены прямые коррелятивные зависимости между филаментацией, дисперсией поливидовых биопленок микроорганизмов и развитием дистрофических и некротические процессов в тканях и органах млекопитающих и птиц. Для оптимизации схемы микробиологической диагностики инфекционной патологии апробированы и подобраны эффективные способы детекции гетероморфных биоплёнок и некультивируемых микроорганизмов. Для предотвращения формирования биопленок патогенных микроорганизмов перспективными являются препараты, снижающие уровень микробиологических показателей первичной контаминации; минимизации адгезивных свойств, а также биоцидов разрушающих межклеточный матрикс.

Выводы. Способность формирования биопленок, вариабельность фенотипических признаков, множественность факторов вирулентности, возникновение устойчивых форм бактерий за счет синтеза экзополисахаридов, значительно снижают эффективность противоэпизоотических и диагностических мероприятий. Разработка ускоренных методов детекции биопленок и дифференциации некультивируемых микроорганизмов позволит научно обосновать и разработать комплекс мероприятий, направленных на предупреждение заболеваний животных и получение безопасных продуктов животноводства, с целью профилактики заболеваний человека.

Об авторах

Е. М. Ленченко
ФГБОУ ВО «Московский государственный университет пищевых производств»
Россия

Ленченко Екатерина Михайловна

125080, Москва, Волоколамское шоссе, дом 11



Н. Ю. Сысоева
ФГБОУ ВО «Московский государственный университет пищевых производств»
Россия

Сысоева Наталья Юрьевна

125080, Москва, Волоколамское шоссе, дом 11



Д. А. Блюменкранц
ФГБОУ ВО «Московский государственный университет пищевых производств»
Россия

Блюменкранц Дмитрий Алексеевич

125080, Москва, Волоколамское шоссе, дом 11



Список литературы

1. Абдуллаева, А. М., Смирнова, И. Р., Трохимец, E. В., & Губанкова, A. A. (2017). Микробиологический контроль полуфабрикатов из мяса индеек при холодильном хранении. Ветеринария, 8, 49-53.

2. Андрюков, Б. Г., Сомова, Л. М., Матосова, Е. В., & Ляпун, И. Н. (2018). Фенотипическая пластичность бактерий как стратегия резистентности и объект современных антимикробных технологий. Современные технологии в медицине, 11(2), 164182. http://dx.doi.org/10.17691/stm2018.11.2.22

3. Бакуменко, О. Е., Андреева, А. А., & Алексеенко, Е. В. (2019). Изучение влияния рецептурных ингредиентов на показатели качества мясных консервов для детского питания. Health, Food and Biotechnology, 1(1), 61-74. http://dx.doi.org/10.36107/hfb.2019.i1.s3

4. Блинкова, Л. П., Пахомов, Ю. Д., & Стоянова, Л. Г. (2010). Свойства некультивируемых и покоящихся форм микроорганизмов. Иммунопатология, аллергология, инфектология, 3, 67-76.

5. Гламаздин, И. Г., Сысоева, Н. Ю., Сикоева, П. К., Першина, Т. А., & Крюковская, Г. М. (2019). Поражение свинины тканевыми цистами, контроль сырья при саркоцистозе. Российский журнал Проблемы ветеринарной санитарии, гигиены и экологии, 2(30), 121-125. http://dx.doi.org/10.25725/vet.san.hyg.ecol.201902002

6. Кирш, И. А., & Фролова, Ю. В. (2016) Антимикробные упаковочные материалы для мясной отрасли. Мясные технологии, 6, 20-21.

7. Ленченко, Е. М. (1996). Морфофункциональные свойства и популяционная изменчивость иер-синий, поражающих сельскохозяйственных животных, в зависимости от температурного фактора. Сельскохозяйственная биология, 6, 88-95.

8. Ленченко, Е. М., & Ванина, Н. Н. (2005). Морфология органов пищеварения и микрофлора кишечника цыплят при заражении Escherichia coli. Сельскохозяйственная биология, 4, 69-74.

9. Ленченко, Е. М., Мансурова, Е. А., & Моторыгин, А. В. (2014). Характеристика токсигенности энтеробактерий, выделенных при желудочно-кишечных болезнях сельскохозяйственных животных. Сельскохозяйственная биология, 2, 94-104.

10. Ленченко, Е. М., Кхай, Ф. В., Ватников,Ю. А., Медведев, И. Н., & Гаврилов, В. А. (2017). Этиологическая структура и дифференциальная диагностика сальмонеллеза птиц. Вестник Российского университета дружбы народов. Серия: Агрономия и животноводство, 12(4), 359-367. 1 http://dx.doi.org/0.22363/2312-797X-2017-12-4-359-367

11. Сачивкина, Н. П., Кравцов, Э. Г., & Васильева, Е. А. (2008). Изучение фермента литиказы как нового антимикотического препарата. Вестник РУДН, серия Агрономия и животноводство, 3, 37-43.

12. Скородумов, Д. И., Ярикова, Ю. А., & Павлова, Е. В. (2012). Роль бактериальных биопленок в инфекционной патологии животных и пищевых производствах. Ветеринария сельскохозяйственных животных, 4, 4-7.

13. Сысоева, Н. Ю., Субботин, В. В., & Верховская, Г. Л. (2003). Использование лактобифадола для коррекции нарушения деятельности желудочно-кишечного тракта ягнят при подготовке к дегельминтизации. Ветеринарная патология, 2 (6), 44-46.

14. Abdullaeva, A. M., Blinkova, L. P., Seryogin, I. G., Udavliev, D. I., Shikhov, S.S., & Pakhomov, Yu. D. (2019). Preventive treatment of druing chamber with uv radiation and ozonization for protection against spoilace of rav smoked sausages. RAP Conference Proceedings, 4, 206-211. http://dx.doi.org/10.37392/RapProc.2019.42

15. Becerra, S. C., Roy, D. C., Sanchez, C. J., Christy, R. J., & Burmeister, D. M. (2016). An optimized staining technique for the detection of Gram positive and Gram negative bacteria within tissue. BMC research notes, 216(9), 10. http://dx.doi.org/10.1186/s13104-016-1902-0

16. Beznaeva, O., Kirsh, I., Bannikova, O. (2018). Surface structure of electret polymeric materials in different process conditions by corona discharge. Amazonia Investiga, 7(14), 39-49.

17. Cadavid, Е., & Echeverri F. (2019). The Search for Natural Inhibitors of Biofilm Formation and the Activity of the Autoinductor C6-AHL in Klebsiella pneumoniae ATCC 13884. Biomolecules, 2(6), 1-12. http://dx.doi.org/10.3390/biom9020049

18. Cai, Y., Yang, D., Wang, J., & Wang, R. (2018). Activity of colistin alone or in combination with rifampicin or meropenem in a carbapenem-resistant bioluminescent Pseudomonas aeruginosa intraperitoneal murine infection model. Journal of Antimicrobial Chemotherapy, 73(2), 456461. http://dx.doi.org/10.1093/jac/dkx399

19. Carreiro, A. P., Guedes, S. F., Panariello, B. H., Silveira, P. V., Janal, M. N., & Duarte, S. (2017). Farnesol Antibiofilm Activity against Candida albicans Reference and Mutant Strains. Microbiology Research Journal International, 22(6), 1-7. http://dx.doi.org/10.9734/MRJI/2017/39345

20. Chandra, J., Kuhn, D. M. , Mukherjee, P. K. , Hoyer, L. L. , McCormick, T., & Ghannoum, M. A. (2001). Biofilm formation by the fungal pathogen Candida albicans: development, architecture, and drug resistance. Journal of bacteriology, 183(18), 5385-5394. http://dx.doi.org/10.1128/jb.183.18.5385-5394.2001

21. Fangjun, C., Zhangcheng, L., Shimei, L., Wei, L., Xiaoyan, Z., Zuoyong, S., Zhenhui, W., Juan, Z., & Manli, S. (2018). Characterization of Klebsiella pneumoniae associated with cattle infections in southwest China using multi-locus sequence typing (MLST), antibiotic resistance and virulence-associated gene profile analysis. Brazilian Journal of Microbiology, 1(49), 93-100. http://dx.doi.org/10.1016/j.bjm.2018.06.004

22. Kontsevaya, S., & Shambazova, S. (2019). Electronic Certification as an Instrument of Effective Veterinary Control in the Turnover of Animal Origin Products. Advances in Biological Sciences Research, 7, 160162. https://dx.doi.org/10.2991/isils-19.2019.38

23. Kondakova, I. A., Lenchenko, E. М., & Lomova, J. V. (2016). Dynamics of immunologic indices in diseases of bacterial etiology and the correction of immune status of calves. Journal of Global Pharma Technology, 11 (8), 8-11. http://dx.doi.org/10.14202/JoGPT.2016.121-160

24. Lenchenko, E., Lozovoy, D., Strizhakov, A., Vatnikov, Yu, Byakhova, V., Kulikov, E., Sturov, N., Kuznetsov, V., Avdotin, V., & Grishin, V. (2019). Features of formation of Yersinia enterocolitica biofilms. Veterinary World, 12(1), 136-140. http://dx.doi.org/10.14202/vetworld.2019.136-140

25. Lenchenko, E. M., Vatnikov, Y. A., Sotnikova, E. D., Kulikov, E. V. Gnezdilova., L. A., Seleznev, S. B., Strizhakov, A. A., & Kuznetsov, V. I. (2017). Experimental toxemia of chickens contaminated with Yersinia enterocolitica Bacteria. Asian Journal of Pharmaceutics, 11(1), 91-96. http://dx.doi.org/10.22377/ajp.v11i01.1094

26. Maarten, G. K., & Ghequire, B. 0. (2018). A Colicin M-Type Bacteriocin from Pseudomonas aeruginosa Targeting the HxuC Heme Receptor Requires a Novel Immunity Partner. Applied and Environmental Microbiology, 84(18), 6-10. http://dx.doi.org/10.1128/AEM.00716-18

27. Mannapova, R. T., & Shajhulow, R. R. (2018). Dynamics of Lactobacillus spp. against the backdrop of candidiasis in the digestive tract of geese. In Scientific research of the SCO countries: Synergy and integration (p. 248-252).

28. McVay, C. S., Velasquez, M., & Fralick, J. A. (2007). Phage therapy of Pseudomonas aeruginosa infection in a mouse burn wound model. Antimicrobial agents and chemotherapy, 51(6), 1934-1938. http://dx.doi.org/10.1128/AAC.01028-06

29. Nidaullah, H., Abirami, N., Shamila-Syuhada, A. K., Chuah, L. O., Nurul, H., Tan, T. P., Abidin, F. W., & Rusul, G. (2017). Prevalence of Salmonella in poultry processing environments in wet markets in Penang and Perlis. Veterinary World, 10(3), 286-292. http://dx.doi.org/10.14202/vetworld.2017.286-292

30. Pakhomov, Y. D., Belus, S. K., Blinkova, L. P., Stoyanova, L. G., & Ustyugova, E. A. (2012). Experimental approach to the induction of nonculturable state of Lactococcus lactis. Biochemistry and Biotechnology: Research and Development, 7, 45-50.

31. Pate, M., Micunovic, J., Golob, M., Vestby, L. K., & Ocepek M. (2019). Salmonella infantis in broiler flocks in Slovenia: the prevalence of multidrug resistant strains with high genetic homogeneity and low biofilm-forming ability. BioMed Research International, 51(6), 238-242. http://dx.doi.org/10.1155/2019/4981463

32. Sachivkina, N., Lenchenko, E., Strizakov, A., Zimina, V., Gnesdilov, L., Gavrilov, V., Byakhova, V., Germanova, S., Zharov, A., & Molchanova, M. (2018). The Evaluation of formation of biomembrane by microscopic Fungi of the Candida Genus. InternationalJournal of Pharmaceutical Research, 10(4), 738-744. http://dx.doi.org/10.31838/ijpr/2018.10.04.128

33. Santos, T., Luana, O., Varjaoa, M., Nery, L., Silvaa, N., Castro, R., Pereirab, L., Hoferb, E., Cristina, D., Rogeria, V., & Almeidaa, C. (2018). Listeria monocytogenes at chicken slaughterhouse: Occurrence, genetic relationship among isolates and evaluation of antimicrobial susceptibility. Food Control, 88, 131-138. http://dx.doi.org/10.1016/j.foodcont.2018.01.015

34. Sicard, J-F., G. L., Bihan, P., Vogeleer, M., & Jacques, J. (2017). Harel Interactions of Intestinal Bacteria with Components of the Intestinal Mucus. Frontiers in Cellular and Infection Microbiology, 7 (387), 1-12. http://dx.doi.org/10.3389/fcimb.2017.00387

35. Sushma, V., Nehra, V., & Jakhar, K. (2018). Aetio-Pathological studies of digestive and respiratory affections in lambs. The Pharma Innovation Journal, 5 (7), 100-105.

36. Surgers, L., Boyd, A., Girard, P. M., Arlet, G., & Decre, D. (2019). Biofilm formation by ESBL-producing strains of Escherichia coli and Klebsiella pneumoniae. International Journal of Medical Microbiology, 309(1), 13-18.

37. Rodriguez-Melcon, C., Riesco-Pelaez, F., Carballo, J., Garcia-Fernandez, C., Capita, R., & Alonso-Calleja, C. (2018). Structure and viability of 24-and 72-h-old biofilms formed by four pathogenic bacteria on polystyrene and glass contact surfaces. Food Microbiology, 76, 513-517. http://dx.doi.org/10.1016/j.fm.2018.06.016

38. Tankhiwale, S., & Nagar, H. (2016). Beta-lactamases in P. aeruginosa: A threat to clinical therapeutics. Current Pediatric Research, 20(12), 253-257. WHO, (2018). Fstimates of the global burden offoodborne diseases. World Health Organization.

39. Yadav, R., Bulitta, J. B., Wang, J., Nation, R. L., & Landersdorfer, C. B. (2017). Evaluation of Pharmacokinetic/Pharmacodynamic ModelBased Optimized Combination Regimens against Multidrug-Resistant Pseudomonas aeruginosa in a Murine Thigh Infection Model by Using Humanized Dosing Schemes. Antimicrobial agents and chemotherapy, 61(12), 8-11. http://dx.doi.org/10.1128/AAC.01268-17


Просмотров: 11


Creative Commons License
Контент доступен под лицензией Creative Commons Attribution 4.0 License.


ISSN 2712-7648 (Online)