Эффективность иммунодиагностических исследований при тканевых паразитозах свиней

Хорошо известно, что свиноводство является одной из самых рентабельных отраслей животноводства и способна в короткие сроки увеличить производство мяса при низких затратах кормов на производство единицы продукции. Именно поэтому создаются и функционируют промышленные комплексы и мелкие товарные хозяйства по выращиванию свиней. Однако наличие тканевых гельминтозов в организме живых животных и свинине существенно влияет на эффективность откорма, качество мяса и биологическую безопасность продукции. Примерно от 2 до 5% туш свиней регистрируются, как пораженные тканевыми паразитами. В Российской Федерации содержится около 25 млн. свиней, потому можно предположить, что свыше 1 млн. свиней являются больными, т.е они неэффективно откармливаются и являются источником возбудителей, опасных для здоровья человека. Вместе с тем существуют методы прижизненной диагностики паразитозов свиней и их применение могло бы существенно повысить экономическую эффективность свиноводческой отрасли улучшить эпидемическую ситуацию по гельминтозам во всех регионах страны. Целью исследования являлось разработка тест- системы на основе ELISA и оценка ее эффективности на убойных животных в некоторых регионах Центрального Федерального Округа. Параметры тест системы отрабатывали на 96 луночных планшетах, в качестве антигена использовали полные экстракты водно-солевых растворов паразитов – E.granulosus, T.spiralis, C.cellulosae, Sarcocystis spp. Сыворотки крови доставлялись с мясокомбинатов на которых производился убой свиней и сопровождались протоколом ветеринарно-санитарной экспертизы. Из 550 проверенных сывороток крови 43 имели антитела т.е. дали положительный ответ в мультиантигенном тесте. По протоколу экспертизы были зарегистрированы 25 туш, пораженных тканевыми паразитами.

1. Анищенко, А. Н. (2017). Актуальные проблемы и перспективы развития подотрасли свиноводства. Проблемы развития территории, 4(90), 146-158.

2. Бессонов, А. С. (2004). Иммунитет и иммуносупрессия при паразитарных болезнях. Труды ВИГИС, 40, 44-51.

3. Бессонов, А. С. (1984). Иммунодепрессивные свойства трихинелл и способы их подавления. Биохимия и физиология гельминтов и иммунитет при гельминтозах. Наука, 32, 15-20.

4. Гламаздин, И. Г., & Сысоева Н. Ю. (2017). Ветеринарно-санитарная оценка продуктов убоя при тканевых паразитозах животных. В Развитие пищевой и перерабатывающей промышленности России: кадры и наука (с.142-143).

5. Гламаздин, И. Г., Сысоева Н. Ю., Сикоева П. К., Першина Т. А., & Крюковская Г. М. (2019). Поражение свинины тканевыми цистами, контроль сырья при саркоцистозе. Российский журнал Проблемы ветеринарной санитарии, гигиены и экологии, 2 (30), 121-125.

6. Зименков, В. А., Сивкова Т. Н., & Доронин-Доргелинский Е. А. (2016). Распространение трихинеллеза диких животных в Российской Федерации. Пермский аграрный вестник, 4(16), 98-101.

7. Успенский, А. В., & Горохов, В. В. (2012). Паразитарные зоонозы. Россельхозакадемия.

8. Bruzinskaite, R., Sarkunas, M., Torgerson, P. R., Mathis, A., & Deplazes, P. (2009): Echinococcosis in pigs and intestinal infection with Echinococcus spp. in dogs in south-western Lithuania. Veterinary Parasitology, 160, 237–241. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/19111990/

9. Chapman, J., Mense M., & Dubey J. P. (2005). Clinical Muscular Sarcocystosis in a Dog. Journal of Parasitology 91(1), 187–190. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/15856899/

10. Flisser, A., Sarti E., Lightowlers M., & Schantz, P. (2003). Neurocysticercosis: regional status, epidemiology, impact and control measures in the Americas. Acta Tropica, 87, 43-51. https://doi.org/10.1016/S0001-706X%2803%2900054-8

11. Gamble, H. R, (1997). Parasites associated with pork and pork products. Scientific and Technical Review of the Office International des Epizooties, 16(2), 496-506.

12. Klun, I., Vujanić, M., Yera, H., Nikolić, A., Ivović, V., Bobić, B., Bradonjić, S., Dupouy-Camet, J., & Djurković-Djaković O. (2011). Toxoplasma gondii infection in slaughter pigs in Serbia: seroprevalence and demonstration of parasites in blood. Veterinary Research, 42, 17. http://www.veterinaryresearch.org/content/42/1/17

13. Sherifi, K., Rexhepi, A., Hamidi, A., Behluli, B., Zessin, K. H., Mathis, A., &Deplazes, P. (2011). Detection of patent infections of Echinococcus granulosus (“sheep-strain”, G1) in naturally infected dogs in Kosovo. Berliner und Münchener Tierärztliche Wochenschrift, 11/12, 518-521. https://doi.org/10.5167/uzh-50941

14. Liu, G., Liang, P., Zhang, S., Guo, A., Wang, L., Zheng, Y., & Luo, X. (2017). TsPKA-r: a potential immunodiagnostic antigen for the detection of porcine cysticercosis. Acta Tropica, 171, 80-85. https://doi.org/10.5167/uzh-50941

15. Mikkonen T., Valkama, J., Wihlman, H., & Sukura, А. (2005). Spatial Variation of Trichinella Prevalence in Rats in Finnish Waste Disposal Sites. Journal of Parasitology, 91(1), 210–213. http://dx.doi.org/10.1645/GE-3230RN

16. Silva, M. R. M. D., Uyhara, C. N. S., Silva, F. H., Espindola, N. M., Poleti, M. D., Vaz, A. J., Meirelles, F. V., & Maia, A. A. M. (2012). Cysticercosis in experimentally and naturally infected pigs: Parasitological and immunological diagnosis. Pesquisa Veterinária Brasileira, 32(4), 297-302. https://www.researchgate.net/publication/262619487

17. Ndao, M., (2009). Diagnosis of Parasitic Diseases: Old and New Approaches. Interdisciplinary Perspectives on Infectious Diseases, 15. https://doi.org/10.1155/2009/278246

18. Pawlowski, Z., Allan, J., & Sarti, E. (2005). Control of Taenia solium taeniasis/cysticercosis; from research towards implementation. International Journal for Parasitology, 35, 1221-1232. https://doi.org/10.1016/j.ijpara.2005.07.015

19. Popović-Dragonjić L., &Kocić, I. (2018). An outbreak of human trichinellosis in the village of Subotinac near the Town of Aleksinac. Acta facultatis medicae Naissensis, 35(2),140-148. https://content.sciendo.com/downloadpdf/journals/afmnai/35/2/article-p140.pdf

20. Svobodová, V., (1991). Use of ELISA for the diagnostics of ovine sarcocystosis, Folia parasitologica, 38(4), 303-308.